货号:UPLC-MS-4271 | 规格:100T/96S | 微量法 |
货号:UPLC-MS-4270 | 规格:50T/48S |
紫外分光光度法 |
试剂名称 |
规格 |
保存条件 |
提取液 |
液体 110 mL×1 瓶 |
4℃保存 |
试剂一 |
液体 15 mL×1 瓶 |
4℃保存 |
试剂二 |
粉剂×1 瓶 |
-20℃保存 |
试剂三 |
粉剂×1 瓶 |
-20℃保存 |
试剂四 |
粉剂×2 支 |
4℃保存 |
试剂五 |
粉剂×1 支 |
-20℃保存 |
试剂六 |
液体 30 μL×1 支 |
4℃保存 |
溶液的配制:
1、 试剂二:临用前加 2.5 mL 蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存两周,禁止反复冻融。
2、 试剂三:临用前加 2.5 mL 蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存两周,禁止反复冻融。
3、 试剂四:临用前取 1 支加入 0.3mL 蒸馏水溶解,4℃保存一周。(1 支溶解后可做 100T,为了延长使用时间, 此产品多给 1 支粉剂)
4、 试剂五:临用前加入 0.3 mL 蒸馏水溶解,-20℃分装保存两周,禁止反复冻融。
5、 试剂六:临用前加入 0.3 mL 蒸馏水溶解,4℃保存一周,也可按比例现用现配。
焦磷酸:果糖-6-磷酸-1-磷酸转移酶(PFP,EC2.7.1.90)是一种胞质酶,广泛存在于植物组织中,与磷酸果糖激酶一样催化果糖-6-磷酸的磷酸化,单 PEP 催化反应为可逆反应,并以焦磷酸代替 ATP,在光合作用碳代谢中起重要作用。
PFP 催化 6-磷酸果糖转化为 1,6-二磷酸果糖,它在醛缩酶和磷酸丙糖异构酶的作用下转变为磷酸二羟丙酮, 再由 α-磷酸甘油脱氢酶和 NADH 催化生成 3-二磷酸甘油和 NAD,340nm 处的吸光度变化反映了 PFP 的活性的高低。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计/酶标仪、低温离心机、水浴锅/恒温培养箱、微量石英比色皿/96 孔 UV 板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水、EP 管。
1、组织:按照质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1 g,加入 1 mL 提取液)加入提取液,冰浴匀浆后于 4℃,20000g 离心 15min,取上清置冰上待测;
2、细胞:按照细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细胞加入 1 mL 提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 3 s,间隔 7 s,总时间 3 min);然后 4℃,20000g 离心 15min,取上清置冰上待测;
3、液体:直接检测。
1、 分光光度计/酶标仪预热 30 min 以上,调节波长至 340 nm,蒸馏水调零。
2、 操作表:
试剂名称(μL) |
测定管 |
空白管 |
试剂一 |
134 |
134 |
试剂二 |
20 |
20 |
试剂三 |
20 |
20 |
试剂四 |
2 |
2 |
试剂五 |
2 |
2 |
试剂六 |
2 |
2 |
样本 |
20 |
- |
蒸馏水 |
- |
20 |
充分混匀后于微量石英比色皿/96 孔 UV 板中测定 37℃条件下,340 nm 处初始值 A1 和 30 min 的吸光值 A2,分别记为 A1 测定管、A1 空白管、A2 测定管,A2 空白管。计算 ΔA= (A1 测定管-A2 测定管)-(A1 空白管-A2 空白管)。 注:也可将试剂一、二、三、四、五、六按操作表比例,配制成工作液,现配现用;空白管只需做 1-2 次。 |
1、按微量石英比色皿计算:
(1) 按照样本蛋白浓度计算
酶活单位定义:每毫克组织蛋白每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。PFP(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(V 样×Cpr) ÷T=53.59×ΔA÷Cpr
(2) 按照样本质量计算
酶活单位定义:每克组织每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。PFP(U /g 质量)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(W×V 样÷V 提取) ÷T=53.59×ΔA÷W
(3) 按照细胞数量计算
酶活单位定义:每 104 个细胞每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。
PFP(U /104 cell)= ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(V 样×细胞数量÷V 提取) ÷T=53.59×ΔA÷细胞数量
(4) 按照液体体积计算
酶活单位定义:每毫升液体每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。PFP(U /mL)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷V 样÷T=53.59×ΔA
V 反总:反应体系总体积,2×10-4L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:比色皿光径,1 cm;V 样:加入样本体积,0.02 mL;V 提取:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,30 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL; W:样本质量,g;109:换算系数,1mol=109 nmol。
2、 按 96 孔 UV 板计算:
将上述公式中的 d=1cm 修改为 d-0.6cm(96 孔 UV 板光径)进行计算即可。
1、每次检测样本数不宜太多以免耽误过多的酶促反应时间。
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