果糖-1.6-二磷酸醛缩酶(FBA)活性检测试剂盒-果糖-1.6-二磷酸醛缩酶(FBA)试剂盒-上海液质



上海液质是一家拥有12000多种高端成熟型生化elisa土壤植物细胞等试剂盒的生产厂家,并承接生化代测Elisa代测HPLC 检测GC检测GC-MS 检测LC-MS检测ICP-MS检测 、土壤植物动物成分酶活检测等科研检测服务。如有需要立即询购


货号:UPLC-MS-4244 规格:100T/96S 微量法
货号:UPLC-MS-4243 规格:50T/48S 紫外分光光度法

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液一

液体 110 mL×1

4℃保存

提取液二

液体 110 mL×1

4℃保存

试剂一

液体 10 mL×1

4℃保存

试剂二

粉剂×1

-20℃保存

试剂三

粉剂×1

4℃保存

试剂四

液体×1

4℃保存

试剂五

液体×1

-20℃保存

溶液的配制:

1 试剂二:临用前加入 2 mL 蒸馏水,充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融;

2 试剂三:临用前加入 2 mL 蒸馏水充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融;

3 试剂四:液体置于试剂瓶内 EP 管中。临用前加入 2 mL 蒸馏水充分溶解,用不完的试剂-分装后 20℃保存, 禁止反复冻融;

4 试剂五:液体置于试剂瓶内 EP 管中。临用前加入 2 mL 蒸馏水充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存, 禁止反复冻融。

产品说明:

果糖 1,6-二磷酸醛缩酶(Fructose 1,6 bisphosphate aldolase,FBA)(EC4.1.2.13)是糖酵解、糖异生、磷酸戊糖途径及光合作用中参与 calvin 循环的重要酶,催化果糖 1,6-二磷酸可逆的裂解为磷酸二羟丙酮和 3-磷酸甘油醛, 广泛存在于动植物及微生物体内,在各种逆境胁迫下表现不同的响应。

果糖 1,6-二磷酸醛缩酶催化果糖 1,6-二磷酸生成 3-磷酸甘油醛和磷酸二羟丙酮,在磷酸丙糖异构酶和 α-磷酸甘油脱氢酶作用下催化 NADH 和磷酸二羟丙酮生成 NAD α-磷酸甘油,340nm 处吸光值的变化可反映果糖 1,6- 二磷酸醛缩酶活性的高低。

注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

紫外分光光度计/酶标仪、天平、低温离心机、微量石英比色皿/96 UV 板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、漩涡震荡仪、超声破碎仪、冰。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

①总 FBA 酶:

组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL) 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液一 充分冰浴匀浆,然后 8000g,4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。

细菌或细胞:按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积(mL) 500~1000:1 的比例(建议 500 万细胞加入 1mL 提取液一),冰浴超声波破碎细菌或细胞(功率 300w,超声 3 秒,间隔 7 秒,总时间 3min);然后 8000g, 4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。

液体:直接检测。

胞浆和叶绿体 FBA 酶的分离:

(1) 按照植物组织质量(g):提取液体积(mL) 1:5-10 的比例(建议称取约 0.1g 样本,加入 1mL 提取液一),手工快速研磨或匀浆,之后于 4℃,200g 离心 5min;

(2) 弃沉淀,取上清在 4℃,8000g 离心 10min(离心时缓慢加速和降速);

(3) 取上清用于测定胞浆 FBA 酶活性取沉淀加 1mL 提取液二,震荡溶解后超声破碎(冰浴,200W,破碎 3s 间歇 7s,总时间 1min),然后 4℃,8000g 离心 10min,上清即为叶绿体中 FBA 酶活性建议测定总FBA酶活性,按照步骤提取粗酶液,若需要分别测定胞浆和叶绿体中的FBA,则按照步骤提取粗酶液。

二、测定步骤

1 分光光度计/酶标仪预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。

2 样本测定:(在微量石英比色皿/96孔UV板中分别加入下列试剂)

 

测定管

空白管

试剂一(µL

100

100

试剂二(µL

20

20

试剂三(µL

20

20

试剂四(µL

20

20

试剂五(µL

20

20

样本(µL

20

-

蒸馏水(µL

-

20

充分混匀后于340nm处测定10s时的吸光值A1,迅速置于37℃(哺乳动物25℃(其他物种水浴5min控温功能的酶标仪可以将温度调至37℃或者25℃,拿出迅速擦干测定310s时的吸光值A2,分别记为A1测定、A2 测定、A1空白和A2空白,计算ΔA测定管=A1测定-A2测定,ΔA空白管=A1空白-A2空白,ΔA=ΔA测定管-ΔA空白管。

(空白管只需做1-2次)

注意:如果检测样本量大,可以将试剂一、二、三、四、五按照5:1:1:1:1(V:V:V:V:V)的比例配成工作液待用(现配现用)。

三、FBA 酶活计算

A、按微量石英比色皿计算: 1、按蛋白浓度计算

酶活单位定义:每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。FBA 酶活(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×109×V 反总÷(V 样×Cpr) ÷T=321.54×ΔA÷Cpr

2、按样本质量计算

酶活单位定义:每 g 组织每分消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。

FBA 酶活(U/g  质量)=ΔA÷(ε×d)×109×V 反总÷(W ×V 样÷V 样总) ÷T=321.54×ΔA÷W

3、按照细胞或细菌数量计算

酶活单位定义:每 104 个细胞或细菌每分钟消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。

FBA 酶活(U/104 cell)=ΔA÷(ε×d)×109×V 反总÷(V 样×细胞数量÷V 样总) ÷T=321.54×ΔA÷细胞数量(万个)4、按液体体积计算

酶活单位定义:每 mL 液体每分钟消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。FBA 酶活(U/mL)=ΔA÷(ε×d)×109×V 反总÷V 样÷T=321.54×ΔA

V 反总:反应体系总体积,2×10-4L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V 样:加入样本体积,0.02mL;V 样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,5min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL 蛋白浓度自行测定;W:样本质量,g;109:单位换算系数,1mol=109nmol。

B、按 96 UV 板计算:

将上述公式中的d-1cm改为d-0.6cm(96孔板光径)进行计算即可。

注意事项:

1、若 ΔA 大于 0.8 建议将样本用相应提取液进行适当的稀释再进行测定,并在计算公式中乘以稀释倍数。

2、若是植物样本,建议在提取完成后 2h 内检测完,如果样本量过大,建议分批提取、检测。

3、由于提取液一中含有一定浓度的蛋白(约 0.5mg/mL),所以在测定样品蛋白浓度时需要减去提取液本身的蛋白含量。


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