辅酶 I NAD (H)含量检测试剂盒(WST 显色法)-辅酶 I NAD (H)试剂盒(WST 显色法)-上海液质



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货号:UPLC-MS-6008 规格:100T/48S 微量法
货号:UPLC-MS-6007 规格:50T/24S 可见分光光度法

产品内容:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

酸性提取液

液体 15 mL×1

2-8℃保存

碱性提取液

液体 15 mL×1

2-8℃保存

试剂一

液体 20 mL×1

2-8℃保存

试剂二

液体 6 mL×1

2-8℃保存

试剂三

液体 12mL×1

2-8℃保存

试剂四

液体 3mL×1

-20℃保存

试剂五

液体 40 mL×1

2-8℃保存

NAD 标准品

粉剂×1

-20℃保存

NADH 标准品

粉剂×1

-20℃保存

溶液的配制:1 NAD 标准品:临用前加入 1.5 mL 蒸馏水,即 2 µmol/mL。-20℃可以保存 2 周。

                   2 NADH 标准品:临用前加入 1.4 mL  蒸馏水,即 2 µmol/mL。-20℃可以保存 2 周。

产品说明:

辅酶 I 包括还原型和氧化型两种形式,在生物氧化中起传递氢的作用。氧化型辅酶 I 又称烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD+)是脱氢酶的辅酶,它在糖酵解、糖异生、三羧酸循环和呼吸链中发挥着不可替代的作用。中间产物会将脱下的氢递给 NAD,使之成为 NADH(还原型辅酶 I)。而 NADH 则会作为氢的载体,在呼吸链中通过化学渗透偶联的方式,合成 ATP。NAD(H)在机体内有重要的生理意义,与物质代谢、能量代谢、抗细胞衰老、抗氧化以及一些疾病的发生密切相关。体内辅酶 I 含量降低会导致细胞损伤或衰亡。

分别用酸性和碱性提取液提取样本中 NAD+ NADH,在 1-mPMS 作用下,WST-1 可与 NADH 反应,产生水溶性 formazan,在 450nm 下有特征吸收峰,而 NAD+可被乙醇脱氢酶还原为 NADH,进一步采用 WST-1 检测。

注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:可见分光光度计、低温离心机、水浴锅,研钵/匀浆器、超声破碎仪、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1、血清(浆)中 NAD+ NADH 的提取:

NAD+的提取:建议取 0.1mL 血清(血浆),加入 0.5mL 酸性提取液,煮沸 5min(盖紧,以防止水分散失) 冰浴冷却后,10000g 4℃离心 10min;取 200μL 上清液,加入 200μL 碱性提取液使之中和;混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,冰上待测。

NADH 的提取:建议取 0.1mL 血清(血浆),加入 0.5 mL 碱性提取液,煮沸 5min (盖紧,以防止水分散失);冰浴冷却后,10000g 4℃离心 10min;取 200μL 上清液,加入 200μL 酸性提取液使之中和;混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,冰上待测。

2、组织中 NAD+ NADH 的提取:

NAD+的提取:建议取 0.1g 组织质量,加入 0.5mL 酸性提取液,冰浴研磨,煮沸 5min (盖紧,以防止水分散失);冰浴冷却后,10000g 4℃离心 10min;取 200μL 上清液,加入 200μL 碱性提取液使之中和;混匀, 10000g 4℃离心 10min,取上清,冰上待测。

NADH 的提取:建议取 0.1 g 组织质量,加入 0.5 mL 碱性提取液,冰浴研磨,煮沸 5min (盖紧,以防止水分散失);冰浴冷却后,10000g 4℃离心 10min;取 200μL 上清液,加入 200μL 酸性提取液使之中和;混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,冰上待测。

3、细胞或细菌中 NAD+   NADH 的提取:

NAD+的提取:先收集细胞或细菌到离心管内,离心弃上清,建议 500 万细胞或者细菌加入 0.5mL 酸性提取液,超声波破碎(冰浴,功率 200W,超声 3s,停 10s,重复 30 次),煮沸 5min(盖紧,以防止水分散失),; 冰浴冷却后,10000g 4℃离心 10min;取 200μL 上清液,加入 200μL 碱性提取液使之中和;混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,冰上待测。

NADH 的提取:建议 500 万细胞或者细菌加入 0.5mL 碱性提取液,超声波破碎(冰浴,功率 200W,超 3s,停 10s,重复 30 次),煮沸 5min(盖紧,以防止水分散失),;冰浴冷却后,10000g 4℃离心 10min 200μL 上清液,加入 200μL 酸性提取液使之中和;混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,冰上待测

二、测定步骤

1 分光光度计预热 30 min 以上,调节波长至 450 nm,蒸馏水调零。

2 NAD 标准品:用蒸馏水稀释为 0.3125、0.15625、0.078、0.039、0.019、0nmol/mL 的标准溶液。0nmol/mL 即为空白管(A )。

3 NADH 标准品:用蒸馏水稀释为 0.625、0.3125、0.15625、0.078、0.039、0.019、0nmol/mL 的标准溶液。0nmol/mL即为空白管(A )。

三、NAD+ NADH 含量计算

1、标准曲线绘制:

        (1) NAD标准曲线的绘制:根据标准管的浓度(x1,nmol/mL)和吸光度ΔA标准(y1,ΔA标准),建立标准曲线。根据标准曲线,将ΔA      测定代入方程得到x1(nmol/mL)。

(2) NADH标准曲线的绘制根据标准管的浓度(x2,nmol/mL)和吸光度ΔA标准(y2,ΔA标准),建立标准曲线。根据标准曲线,将ΔA´ 代入方程得到x2(nmol/mL)。

2、NAD+和NADH含量计算

(一)NAD+含量计算

(1) 按液体体积计算:NAD+含量(nmol/mL)= x1×(V 提取+V 血清)÷V 血清=11×x1

(2) 按样本蛋白浓度计算 NAD+ (nmol/mg prot)= x1×V 提取÷(V 提取×Cpr)= x1 ÷ Cpr

(3) 按样本鲜重计算 NAD+含量(nmol/g 质量)= x1×V 提取÷W= x1÷W

(4) 按细胞数量计算:NAD+含量(nmol/104 cell)= x1×V 提取÷500=0.002×x1

二)NADH 含量计算

(1) 按液体体积计算:NADH 含量(nmol/mL)= x2×(V 提取+V 血清)÷V 血清=11×x2

(2) 按样本蛋白浓度计算 NADH (nmol/mg prot)= x2×V 提取÷(V 提取×Cpr)= x2 ÷ Cpr

(3) 按样本鲜重计算 NADH 含量(nmol/g  质量)= x2×V 提取÷W= x2÷W


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