丙酮酸羧化酶(PC)活性检测试剂盒-丙酮酸羧化酶(PC)试剂盒-上海液质



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货号:UPLC-MS-4192 规格:100T/96S 微量法
货号:UPLC-MS-4191 规格:50T/48S 可见分光光度法

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液

液体 110 mL×2

4℃保存

试剂一

液体 15 mL×1

4℃保存

试剂二

液体 5 mL×1

4℃保存

试剂三

粉剂×1

-20℃保存

试剂四

粉剂×1

-20℃保存

试剂五

液体 2 mL×1

4℃保存

试剂六

液体 5 μL×1

4℃保存

试剂六稀释液

液体 5 mL×1

4℃保存

溶液的配制:

1 试剂三:临用前加入 3 mL 蒸馏水溶解;可分装后-20℃保存,避免反复冻融;

2 试剂四:临用前加入 2 mL 蒸馏水溶解;可分装后-20℃保存,避免反复冻融;

3 试剂六:液体置于试剂瓶内 EP 管中。临用前按试剂六:试剂六稀释液=1:428(V:V)的比例稀释试剂六备用,现用现配;

4 工作液的配制:按照试剂二:试剂三:试剂四=2:1:1 的体积比例充分混匀,现用现配。

产品说明:

丙酮酸羧化酶(pyruvate carboxylase,PC,EC 6.4.1.1)广泛存在于动物、霉菌和酵母的线粒体中,但在植物体和大部分细菌中却不含此酶。是供给草酰乙酸的主要补充反应,是糖异生过程的第一个限速酶。

PC 不可逆的催化丙酮酸、ATP、CO2 和水生成草酰乙酸、ADP Pi,苹果酸脱氢酶进一步催化草酰乙酸和NADH 生成苹果酸和 NAD+,在 340nm 下测定 NADH 氧化速率,即可反映 PC 活性。

注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器用品:

紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、微量石英比色皿/96孔UV板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤;

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1 取约 0.1g 组织或收集 500 万细胞,加入 1.0 mL 提取液,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。

2 4℃1000g 离心 10min。将上清液移至另一离心管中,4℃11000g 离心 15min。

3 上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的 PC(此步可选做,可以判断线粒体提取效果)。

4 在沉淀中加入 1mL 提取液,超声波破碎(功率 20%,超声 5 秒,间隔 10 秒,重复 12 次),用于 PC 活性测定, 并且用于蛋白含量测定。

二、测定步骤

1 分光光度计/酶标仪预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。

2 试剂一用前37℃孵育15min。

3 操作表:

试剂名称(µL

空白管

测定管

试剂一

90

90

工作液

64

64

试剂五

16

16

试剂六

20

20

样本

 

10

蒸馏水

10

 

在微量石英比色皿/96 UV 板中分别加入上述试剂,充分混匀后于 340nm 处测定 10s 时的吸光值A1,迅速置于37水浴或培养箱2min酶标仪有控温功能可将温度调至37,拿出迅速擦干测定130s时的吸光值 A2,计算 ΔA 测定管=A1 测定-A2 测定,ΔA 空白管=A1 空白-A2 空白,ΔA=ΔA 测定管-ΔA 空白管。(空白管只需做 1-2 次)

三、PC酶活计算

         1. 按微量石英比色皿计算:

单位的定义:每毫克蛋白每分钟消耗1 nmol  的NADH定义为一个酶活力单位。

PC酶活(U/mg prot)= ΔA÷(ε×d)×109×V反总÷(V样×Cpr)÷T= 1607×ΔA÷Cpr

ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V反总:反应体系总体积,2×10-4L;V样: 反应体系中样本体积,0.01mL;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;T:反应时间:2min。

2. 按96孔UV板计算:

将上述计算公式中的d-1cm改为d-0.6cm进行计算即可。

注意事项:

1. 为保证实验结果的准确性,需先取 1-2 个样做预实验,ΔA 大于 0.8 时(96 UV 板测定时 ΔA 大于 0.5 时), 建议将粗酶液用提取液稀释后再进行测定。当 ΔA 小于 0.01 时,可以延长反应时间(5min 10min)来测定。

2. 空白管为检测各试剂组分质量的检测孔,正常情况下,变化不超过 0.05。

3. 样本的蛋白浓度需自行测定,由于提取液中含有较高的蛋白浓度( 1mg/mL),所以测定样本蛋白浓度时需扣除提取液自身蛋白浓度。

4. 推荐使用样本蛋白浓度计算酶活,若用样本质量计算,则需加测胞浆提取物酶活,上清和沉淀酶活之和方为总酶活。

5. 本试剂盒试剂足够完成 100 管反应。

6. 附:使用样本重量计算公式:(样本检测数为 100T/48S)

         (1) 按微量石英比色皿计算:

A、上清中 PC 活力的计算:

按样本质量计算:

酶活定义:每克样本每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。

PC 酶活(U/g 质量)=ΔA1÷(ε×d)×109×V 反总÷(V 样×W÷V 样总)÷T = 1607×ΔA1÷W

ΔA1:上清测定值;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V 反总:反应体系总体积,2×10-4L;V 样:反应体系中样本体积,0.01mL;V 提取:加入的提取液体积,1mL;T:反应时间:2min;W 样本质量,g。

B、沉淀中 PC 活力的计算:

按样本质量计算:

酶活定义:每克样本每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。

PC 酶活(U/g 质量)=ΔA2÷(ε×d)×109×V 反总÷(V 样×W÷V 样总)÷T = 1607×ΔA2÷W

ΔA2:上清测定值;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V 反总:反应体系总体积,2×10-4L;V 样:反应体系中样本体积,0.01mL;V 提取:沉淀重悬体积,1mL;T:反应时间:2min;W 样本质量,g。

C、样本 PC 总活力的计算:

样本 PC 总活力即为上清中 PC 活力与沉淀中 PC 活力之和。按样本质量计算:

PC(U/g 质量)=1607×ΔA1÷W+1607×ΔA2÷W。

(2)  96  UV 板计算:

将上述计算公式中的 d-1cm 改为 d-0.6cm 进行计算即可。


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