α-酮戊二酸脱氢酶(α-KGDH)活性检测试剂盒-α-酮戊二酸脱氢酶(α-KGDH)试剂盒-上海液质



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货号:UPLC-MS-4331 规格:100T/96S 微量法
货号:UPLC-MS-4330 规格:50T/48S 紫外分光光度法

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

试剂一

液体 110 mL×1

4℃保存

试剂二

液体 1 mL×1

-20℃保存

试剂三

液体 22 mL×1

4℃保存

试剂四

粉剂×1

4℃保存

试剂五

粉剂×1

4℃保存

试剂六

粉剂×1

-20℃保存

试剂七

粉剂×1

-20℃保存

试剂八

粉剂×1

-20℃保存

溶液的配制:

1. 试剂八:临用前加入 0.8 mL 双蒸水充分混匀待用,用不完的试剂仍-20℃避光保存。

2. 工作液的配制:临用前把试剂四、试剂五、试剂六、试剂七转移到试剂三中混合溶解待用。

产品说明:

α-KGDH(EC 1.2.4.2)广泛存在于动物、植物微生物和培养细胞的线粒体中,是三羧酸循环调控关键酶之一, 催化α-酮戊二酸氧化脱羧生成琥珀酰辅酶A。

α-KGDH催化α-酮戊二酸、NAD+和辅酶A生成琥珀酰辅酶A、二氧化碳和NADH,NADH在340 nm有特征吸收峰,以NADH的生成速率表示α-KGDH活性。

注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

紫外分光光度计/酶标仪、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板(UV板)、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

称取约 0.1g 组织或收集约 500 万细胞,加入 1mL 试剂一和 10μL 试剂二,冰浴用匀浆器或研钵充分研磨,4 ℃ 11000g 离心 10min,取上清,置冰上待测。

二、操作步骤

1 分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。

2 空白管:取200μL工作液加入微量石英比色皿或96孔板中,37℃孵育5min后取出比色皿,再依次加入8μL试剂八和12μL 蒸馏水,混匀并立即测量340nm处0s的吸光值A1,37℃准确反应2min,记录340nm处2min时的吸光值A2,计算ΔA 空白=A2-A1。

3 测定管:取200μL工作液加入微量石英比色皿或96孔板中,在37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)孵育5min后取出比色皿,再依次加入8μL试剂八和12μL样本,混匀并立即测量340nm处0s的吸光值A3,37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)中准确反应2min,记录340nm处2min时的吸光值A4,计算ΔA测定=A4-A3。

三、α-KGDH活性计算

a. 用微量石英比色皿测定的计算公式如下:

1. 按样本蛋白浓度计算

单位的定义:每mg组织蛋白在反应体系中每分钟生成1nmol的NADH定义为一个酶活力单位。

α-KGDH活性(U/mg prot)=[(ΔA测定-ΔA空白)÷(ε×d)×V反总×109]÷(Cpr×V样) ÷T=1473.7×(ΔA测定-ΔA空白)÷Cpr

2. 按样本质量计算

单位的定义:每g组织在反应体系中每分钟生成1nmol的NADH定义为一个酶活力单位。

α-KGDH活性(U/g 质量)=[(ΔA测定-ΔA空白)÷(ε×d)×V反总×109]÷(V样÷V样总×W)÷T=1488.5×(ΔA测定-ΔA空白)÷W

3. 按细菌或细胞数量计算

单位的定义:每1万个细菌或细胞在反应体系中每分钟生成1nmol的NADH定义为一个酶活力单位。

α-KGDH活性(U/104 cell)=[(ΔA测定-ΔA空白)÷(ε×d)×V反总×109]÷(V样÷V样总×500)÷T

=2.977×(ΔA测定-ΔA空白)

V反总:反应体系总体积,2.2×10-4L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V 样:加入样本体积,0.012mL;V样总:加入试剂一和试剂二体积,1.01mL;T:反应时间,2min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万;109:单位换算系数,1mol=109nmol。

b. 96孔板测定的计算公式如下:

1. 按样本蛋白浓度计算

单位的定义:每mg组织蛋白在反应体系中每分钟生成1nmol的NADH定义为一个酶活性单位。

α-KGDH活性(U/mg prot)=[(ΔA测定-ΔA空白)÷(ε×d)×V反总×109]÷(Cpr×V样) ÷T=2456.2×(ΔA测定-ΔA空白)÷Cpr

2. 按样本质量计算

单位的定义:每g组织在反应体系中每分钟生成1nmol的NADH定义为一个酶活性单位。

α-KGDH活性(U/g 质量)=[(ΔA测定-ΔA空白)÷(ε×d)×V反总×109]÷(V样÷V样总×W)÷T=2480.7×(ΔA测定-ΔA空白)÷W

3. 按细菌或细胞数量计算

单位的定义:每1万个细菌或细胞在反应体系中每分钟生成1nmol的NADH定义为一个酶活性单位。

α-KGDH活性(U/104 cell)=[(ΔA测定-ΔA空白)÷(ε×d)×V反总×109]÷(V样÷V样总×500) ÷T=4.962×(ΔA测定-ΔA空白)

V反总:反应体系总体积,2.2×10-4L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:96孔板光径,0.6cm V样:加入样本体积,0.01mL;V样总:加入试剂一和试剂二体积,1.01mL;T:反应时间,2min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万;109:单位换算系数,1mol=109nmol。

注意事项:

1 测定过程中所有试剂和样本在冰上放置,以免变性和失活。

2 比色皿中反应液的温度必须保持 37℃ 25℃,取小烧杯一只装入一定量的 37℃ 25℃蒸馏水,将此烧杯放 37℃ 25℃水浴锅中。在反应过程中把比色皿连同反应液放在此烧杯中。

3 最好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以保证实验结果的准确性。

4 测定管的 ΔA 值在 0.01-0.25 之间,若测定管的 ΔA 值大于 0.25,需将样本进行稀释。

5 由于提取液中含有一定浓度的蛋白 1mg/mL),所以在测定样本蛋白浓度时需要减去提取液本身的蛋白含量。


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