3-磷酸甘油酸激酶(PGK)活性检测试剂盒-3-磷酸甘油酸激酶(PGK)试剂盒-上海液质



上海液质是一家拥有12000多种高端成熟型生化elisa土壤植物细胞等试剂盒的生产厂家,并承接生化代测Elisa代测HPLC 检测GC检测GC-MS 检测LC-MS检测ICP-MS检测 、土壤植物动物成分酶活检测等科研检测服务。如有需要立即询购


货号:UPLC-MS-4203 规格:100T/96S 微量法
货号:UPLC-MS-4202 规格:50T/48S 紫外分光光度法

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液

液体 120 mL×1

4℃保存

试剂一

液体 10 mL×1

4℃保存

试剂二

粉剂×1

-20℃保存

试剂三

粉剂×1

-20℃保存

试剂四

粉剂×1

-20℃保存

试剂五

粉剂×1

-20℃保存

溶液的配制:

1 试剂二:临用前加入 2.5 mL 蒸馏水充分溶解后待用,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融;

2 试剂三:临用前加入 1 mL  蒸馏水充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融;

3 试剂四:临用前加入 1 mL  蒸馏水充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融;

4 试剂五:粉剂置于试剂瓶内棕色管中。临用前加入 4 mL 蒸馏水充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存, 禁止反复冻融;

5 工作液的配制:按照蒸馏水:试剂一:试剂二:试剂三:试剂四:试剂五=6:10:2:1:1:4的体积比例充分混匀,现用现配。

产品说明:

3-磷酸甘油酸激酶是糖酵解的关键酶,也是生物得以生存的关键酶。广泛存在于动植物和微生物体内,具有影响 DNA 复制和修补及刺激病毒 RNA 合成等生物学功能,广泛应用于药物靶标设计。

3-磷酸甘油酸激酶催化 3-磷酸甘油酸和 ATP 产生 1,3-二磷酸甘油酸和 ADP,1,3-二磷酸甘油酸在 3-磷酸甘油醛脱氢酶和 NADH 作用下产生 3-磷酸甘油醛、NAD 和磷酸,引起 340nm 处的吸光度下降,即反映了 3-磷酸甘油酸激酶的活性的高低。

注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

紫外分光光度计/酶标仪、低温台式离心机、水浴锅、微量石英比色皿/96 UV 板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL) 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液 进行冰浴匀浆,然后 10000g,4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。

细胞:按照细胞数量(104 个):提取液体积(mL) 500~1000:1 的比例(建议 500 万细胞加入 1mL 提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 3 秒,间隔 7 秒,总时间 3min);然后 10000g,4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。

血清/血浆:直接检测。

二、测定步骤

1 分光光度计/酶标仪预热30min 以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。

2 样本测定:(在微量石英比色皿/96孔UV板中分别加入下列试剂)

试剂名称(µL

空白管

测定管

工作液

180

180

样本

 

20

蒸馏水

20

 

在微量石英比色皿/96UV板中分别加入上述试剂,充分混匀后于340nm处测定10s时的吸光值A1,迅速置于37℃(哺乳动物25℃(其他物种水浴或培养箱5min酶标仪有控温功能可将温度调至37℃25℃,拿出迅速擦干测定310s时的吸光值A2,计算ΔA测定管=A1测定-A2测定,ΔA 空白管=A1空白-A2空白,ΔA=ΔA测定管-ΔA空白管。(空白管只需做1-2次)

三、PGK活性计算

A、按微量石英比色皿计算:

1、按照样本蛋白浓度计算

酶活单位定义:每毫克组织蛋白每分钟消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。PGK(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(V 样×Cpr) ÷T=321.54×ΔA÷Cpr

2、按照样本质量计算

酶活单位定义:每克组织每分钟消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。PGK(U/g 质量)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(W×V 样÷V 样总) ÷T=321.54×ΔA÷W

3、按照液体体积计算

酶活单位定义:每 mL 血清(浆)每分钟消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。PGK(U/mL)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷V 样÷T=321.54×ΔA÷W

4、按照细胞数量计算

酶活单位定义:每 104 个细胞每分钟消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。PGK(U/104 cell)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(500×V 样÷V 样总)÷T=0.643×ΔA

V 反总:反应体系总体积,2×10-4L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V 样:加入样本体积,0.02mL;V 样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,5min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:500 万个细胞;109:单位换算系数,1mol=109nmol。

B、按 96 UV 板计算:

将上述公式中的 d-1cm 改为 d-0.6cm(96 UV 板光径)进行计算即可。

注意事项:

1. ΔA 大于 0.8 或者 A1 测定小于 0.9 时(96 UV 板是当 ΔA 大于 0.5 或者 A1 测定小于 0.6 时),建议将粗酶液用提取液稀释后再进行测定。当 ΔA 小于 0.01 时,可以延长反应时间(10min 15min)或增加样本体积来测定。

2. 空白管为检测各试剂组分质量的检测孔,正常情况下,变化不超过 0.01。

3. 样本的蛋白浓度需自行测定,由于提取液中含有一定浓度的蛋白( 1mg/mL),所以测定样本蛋白浓度时需扣除提取液自身蛋白浓度。


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