上海液质是一家拥有12000多种高端成熟型生化、elisa、土壤、植物、细胞等试剂盒的生产厂家，并承接生化代测，Elisa代测，HPLC 检测，GC检测，GC-MS 检测，LC-MS检测，ICP-MS检测 、土壤、植物、动物，成分酶活检测等科研检测服务。如有需要立即询购

货号：UPLC-MS-4529

规格：100T/48S

微量法

产品组成：使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致，有疑问请及时联系工作人员。

溶液的配制：

1、 试剂二：使用前先离心再吹打混匀。根据样本量将试剂二用蒸馏水稀释 10 倍后使用，当天用完。

2、 试剂四：根据样本量将试剂四用蒸馏水稀释 5 倍后使用，当天用完。

产品说明：

SOD（EC 1.15.1.1）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，催化超氧化物阴离子发生歧化作用，生成 H2O2 和O2。SOD 不仅是超氧化物阴离子清除酶，也是H2O2 主要生成酶，在生物抗氧化系统中具有重要作用。通过黄嘌呤及黄嘌呤氧化酶反应系统产生超氧阴离子(O -)，O  -可还原氮蓝四唑生成蓝色甲臜，后者在 560nm处有吸收；SOD 可清除O -，从而抑制了甲臜的形成；反应液蓝色越深，说明SOD 活性愈低，反之活性越高。

注意：实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品：

可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、可调式移液器、微量玻璃比色皿/96 孔板、细胞超声破碎仪、研钵/ 匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤：

一、样本处理（可适当调整待测样本量，具体比例可以参考文献）

1. 细胞、细菌样本：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清，按照每 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液， 超声波破碎（功率 200w，超声 3s，间隔 10s，重复 30 次）。8000g 4℃离心 10 分钟，取上清，置冰上待测。

2. 组织样本：按照组织质量（g）：提取液体积（mL）为 1:5-10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL 提取液），进行冰浴匀浆；8000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。

3. 血清（浆）样本：直接检测。

二、测定步骤

1. 分光光度计/酶标仪预热 30min 以上，调节波长至 560nm，蒸馏水调零。

2. 测定前将试剂一、三和四 37℃（哺乳动物）或 25℃（其它物种）水浴 5min 以上。

3. 样本测定（按顺序在 96 孔板或加入下列试剂）

充分混匀，37℃水浴 30min 后，560nm 处测定各管吸光值 A。计算 ΔA 测定=A 测定-A 对照，ΔA 空白=A1 空白-A2 空白。如底部有沉淀，混匀后再行测定。（空白管 1 和空白管 2 各只需做 1~2 管；每个样本有一个对照管）

三、SOD 活性计算

1、抑制百分率的计算

抑制百分率=(ΔA 空白-ΔA 测定) ÷ΔA 空白×100%

尽量使样本的抑制百分率在 30-70%范围内，越靠近 50%越准确。如果计算出来的抑制百分率小于 30%或大于 70%，则通常需要调整加样量后重新测定。如果测定出来的抑制百分率偏高，则需适当稀释样本；如果测定出来的抑制百分率偏低，则需重新准备浓度比较高的待测样本或者提高操作表中样本体积，同时减少相同的蒸馏水体积。

2、SOD 酶活性单位：在上述黄嘌呤氧化酶偶联反应体系中抑制百分率为 50%时，反应体系中的 SOD 酶活力定义为一个酶活力单位。

3、SOD 酶活性计算：

（1） 血清（浆）SOD 活性（U/mL）=[抑制百分率÷(1 -抑制百分率)×V 反总] ÷V 样×F

=10×抑制百分率÷(1 -抑制百分率) ×F

（2） 组织、细菌或培养细胞 SOD 活力计算：

a. 按样本蛋白浓度计算

SOD 活性（U/mg prot）=[抑制百分率÷(1 -抑制百分率)×V 反总] ÷(V 样×Cpr)×F

=10×抑制百分率÷(1 -抑制百分率) ÷Cpr×F

b. 按样本质量计算

SOD 活性（U/g 质量）=[抑制百分率÷(1 -抑制百分率)×V 反总] ÷(W×V 样÷V  样总)×F

=10×抑制百分率÷(1 -抑制百分率) ÷W×F

c. 按细菌或细胞数量计算

SOD 活力（U/104 cell）=[抑制百分率÷(1 -抑制百分率)×V 反总] ÷(500×V 样÷V 样总)×F

=0.02×抑制百分率÷(1 -抑制百分率)×F

V 反总：反应总体积，0.2mL；V 样：加入反应体系中的样本体积，0.02mL；V 样总：加入提取液体积 1mL； Cpr：蛋白样本浓度，mg/mL；W：样本质量，g；500：细胞或细菌总数，500 万；F：样本稀释倍数。

注意事项：

1、 样本和试剂二使用时在冰上放置。