植物花色苷含量检测试剂盒-植物试剂盒-花色苷试剂盒



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货号:UPLC-MS-4304 规格:100T/48S  微量法
货号:UPLC-MS-4303 规格:50T/24S  可见分光光度法

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液

液体 50 mL×1

2-8℃保存

试剂一

液体 15 mL×1

2-8℃保存

试剂二

液体 15 mL×1

2-8℃保存

 

产品说明:

花色苷是一类可食用的易溶于水等溶剂的天然色素。花色苷使植物呈现多彩的颜色,本身更具有多种保健作   用,因而在天然食用色素、保健品和医药行业都有着广阔的应用前景。

根据花色苷在不同pH下的结构性质测定花色苷含量,在pH为1时花色苷在530nm处有最大吸收峰,而当pH为4.5       时,花色苷转变为无色查尔酮形式在530nm处无吸收峰,通过测定不同pH下的530nm和700nm处的吸光度值计算样本中花色苷的含量。

注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计/酶标仪、离心机、水浴锅、可调式移液器、微量玻璃比色皿/96孔板、研钵/匀浆器和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

按照样本质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 样本,加入 1mL 提取液),充分匀浆后转移到 EP 管中,提取液定容至 1mL,盖紧后 60℃浸提 30min,期间可震荡数次。12000rpm,常温离心 10min,取上清液待测。

二、测定步骤

1. 可见分光光度计/酶标仪预热30min以上,可见分光光度计蒸馏水调零。

2. 加样表:在96孔板中分别加入

试剂名称(μL

测定管1

测定管2

样本

20

20


试剂一

180

-

试剂二

-

180

充分混匀后测定测定管 1 和测定管 2 分别在 530nm 700nm 处的吸光度,测定管 1 530nm 700nm 处的

 

吸光值记为 A1、A1’,测定管 2 530nm 700nm 处的吸光值记为 A2、A2’,计算ΔA=(A1-A1’)-(A2-A2’)。

三、花色苷含量计算

A、以微量玻璃比色皿计算:

1.按样本质量计算:

花色苷含量(μmol/g 质量)=[ΔA÷(ε×d)×103×F]×V提取÷W=0.037×ΔA× F÷W 2.按样本蛋白浓度计算

花色苷含量(μmol/mg prot)=[ΔA÷(ε×d)×103×F]×V提取÷(Cpr ×V提取)=0.037×ΔA×F÷Cpr

F:稀释倍数,该反应体系下为10;d:比色皿光径,1cm;W:样本质量,g;ε:花色苷的摩尔消光系数, 2.69×104mL/mmol/cm;V提取:提取液总体积,1mL;103:单位换算系数,1mmol=103μmol;Cpr:样本蛋白浓度, mg/mL(蛋白浓度需用PBS单独提取后自行测定)。

B、以96孔板计算:

1. 按样本质量计算

花色苷含量(μmol/g 质量)=[ΔA÷(ε×d)×103×F] ×V提取÷W=0.062×ΔA× F÷W

2. 按样本蛋白浓度计算

花色苷含量(μmol/mg prot)=[ΔA÷(ε×d)×103×F] ×V提取÷(Cpr×V提取)=0.062×ΔA×F÷Cpr

F:稀释倍数,该反应体系下为10;d:96孔板光径,0.6cm;W:样本质量,g;ε:花色苷的摩尔消光系数, 2.69×104mL/mmol/cm;V提取:提取液总体积,1mL;103:单位换算系数,1mmol=103μmol;Cpr:样本蛋白浓度, mg/mL(蛋白浓度需用PBS单独提取后自行测定)。

注意事项:

1. 如果A1大于1,可以适当加大稀释倍数,保证总体积1mL不变,如10μL上清液和180μL试剂一(相当于稀释20      倍);如果A1小于0.1,可以适当缩小稀释倍数,保证总体积不变,如100μL上清液和100μL试剂一(相当于稀释2倍),使A1保持在0.1~1范围内,可提高检测灵敏度;注意应同样调整上清液和试剂二体积比例;计算时以实际稀释倍数代入计算公式中。

2. 因提取液会使蛋白变性,若使用蛋白浓度计算需用PBS单独提取后自行测定。


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