货号:UPLC-MS-4387 | 规格:100T/96S | 微量法 |
货号:UPLC-MS-4386 | 规格:50T/48S |
紫外分光光度法 |
试剂名称 |
规格 |
保存条件 |
提取液 |
液体 110 mL×1 瓶 |
4℃保存 |
试剂一 |
液体 12mL×1 瓶 |
4℃保存 |
试剂二 |
粉剂×1 瓶 |
4℃保存 |
试剂三 |
粉剂×1 瓶 |
-20℃保存 |
试剂四 |
液体×1 瓶 |
-20℃保存 |
溶液的配制:
1、试剂二:临用前加入 2 mL 蒸馏水充分溶解,4℃保存;
2、试剂三:临用前加入 3.33 mL 蒸馏水充分溶解待用,可溶解后分装-20℃保存,避免反复冻融;
3、试剂四:液体置于试剂瓶内 EP 管中。临用前加 2 mL 试剂一充分溶解,可溶解后分装-20℃保存,避免反复冻融。
MDHAR催化MDHA还原生成AsA,在抗坏血酸氧化还原代谢中具有重要作用。
MDHAR催化NADH还原MDHA生成AsA和NAD+,NADH在340 nm有特征吸收峰,但是NAD+没有。通过测定340nm光吸收下降速率,来计算出MDHAR活性。
注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
研钵/匀浆器、冰、台式离心机、紫外分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96孔UV板、可调式移液枪和双蒸水。
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1、组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)1:5-10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液) 进行冰浴匀浆。10000rpm,4℃离心 10min,取上清置冰上待测。
2、细菌、细胞:按照细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为 500-1000:1 的比例(建议 500 万细胞加入 1mL 提取液),冰浴超声破碎细胞(功率 300w,超声 3s,间隔 7s,总时间 3min);然后 10000rpm,4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。
1、 分光光度计/酶标仪预热30min,调节波长到340nm,蒸馏水调零。
2、 试剂一在25℃水浴锅中预热30min。
3、 依次在微量石英比色皿/96孔UV板中加入下列试剂
试剂名称(μL) |
空白管 |
测定管 |
试剂二 |
20 |
20 |
试剂三 |
20 |
20 |
试剂四 |
20 |
20 |
试剂一 |
80 |
80 |
蒸馏水 |
60 |
|
上清液 |
|
60 |
迅速混匀后于 340nm 比色,记录 30s 和 150s 的吸光值,分别记为 A1、A2,ΔA=A1-A2,得到 ΔA 测定管、ΔA 空白管。
MDHAR活性单位定义:25℃中每毫克蛋白每分钟氧化1μmol NADH为一个酶活单位。MDHAR (U/mg prot) =[(ΔA测定管-ΔA空白管)÷(ε×d)×V反总×106]÷(Cpr×V样)÷T=0.268×(ΔA测定管-ΔA空白管)÷Cpr
2. 按样本质量计算
MDHAR活性单位定义:25℃中每克样本每分钟氧化1μmol NADH为一个酶活单位。MDHAR (U/g 质量) =[(ΔA测定管-ΔA空白管)÷(ε×d)×V反总×106]÷(V样÷V样总×W)÷T=0.268×(ΔA测定管-ΔA空白管) ÷W
3. 按细胞数量计算
MDHAR活性单位定义:25℃中每104个细胞每分钟氧化1μmol NADH为一个酶活单位。MDHAR (U/104 cell) =[(ΔA测定管-ΔA空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T=0.268×(ΔA测定管-ΔA空白管) ÷细胞数量
ε:NADH摩尔消光系数,6220 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;106:单位换算系数,1mol=1×106μmol;V 反总:反应体系总体积,0.2mL=2×10-4L;V样:加入反应体系中上清液体积,60μL=0.06mL;V样总:提取液体积, 1mL;Cpr:上清液蛋白浓度,mg/mL,蛋白质浓度需要另外测定;W:样本质量,g;T:反应时间,2min;细胞数量:以104为单位计量,万个。
b. 使用96孔UV板测定的计算公式如下:
将上述公式中的d-1cm改为d-0.6cm(96孔UV板光径)进行计算即可。
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