货号:UPLC-MS-4205 | 规格:100T/96S | 微量法 |
货号:UPLC-MS-4204 | 规格:50T/48S |
紫外分光光度法 |
试剂名称 |
规格 |
保存条件 |
提取液 |
液体 60 mL×1 瓶 |
4℃保存 |
试剂一 |
液体 45 mL×1 瓶 |
4℃保存 |
试剂二 |
粉剂×1 支 |
-20℃保存 |
试剂三 |
粉剂×1 支 |
-20℃保存 |
试剂四 |
液体 50μL×1 瓶 |
4℃保存 |
溶液的配制:
1、 试剂三:临用前每支加入 1.5mL 双蒸水充分溶解备用,用不完的试剂仍 4℃保存一周;
2、 试剂四:液体置于试剂瓶内 EP 管中。临用前根据用量按照试剂四:蒸馏水为 1:20 的体积比例充分混匀, 冰上放置备用,现用现配;
3、 工作液的配置:临用前将试剂二转移至试剂一中,充分溶解待用,现配现用。
PK(EC 2.7.1.40)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,催化糖酵解过程中的最后一步反应,是糖酵解过程中的主要限速酶之一,也是产生ATP的关键酶之一,因此测定PK活性具有重要意义。
PK催化磷酸烯醇式丙酮酸和ADP生成ATP和丙酮酸,乳酸脱氢酶进一步催化NADH和丙酮酸生成乳酸和NAD+, 在340nm下测定NADH下降速率,即可反映PK活性。
需自备的仪器和用品:
紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 石英比色皿、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1. 细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为 500-1000: 1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或者 200W,超声 3s, 间隔 10s,重复 30 次);8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
2. 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5-10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液),进行冰浴匀浆;8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
3. 血清(浆)样本:直接检测。
试剂名称(μL) |
测定管 |
工作液 |
900 |
试剂三 |
30 |
试剂四 |
15 |
样本 |
30 |
将上述试剂按顺序加入 1 mL 石英比色皿中,立即混匀,加样本的同时开始计时,在 340 nm 波长下记录 20 秒时的初始吸光度 A1,比色后迅速将比色皿连同反应液一起放入 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴中准确反应 2 分钟;迅速取出比色皿并擦干,340 nm 下比色,记录 2 分 20 秒时的吸光度 A2,计算 ΔA=A1-A2。
三、PK 活力单位的计算
1. 按血清(浆)PK体积计算
单位的定义:每毫升血清(浆)在反应体系中每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。PK(U/mL)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109] ÷V样÷T=2613×ΔA
2. 按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。PK(U/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109] ÷(Cpr×V样)÷T=2613×ΔA÷Cpr
3. 按样本质量计算
单位的定义:每g组织每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。PK(U/g 质量)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109] ÷(W×V样÷V样总)÷T=2613×ΔA÷W4. 按细菌或细胞数量计算
单位的定义:每1万个细菌或细胞在反应体系中每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。PK(U/104 cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109] ÷(500×V样÷V样总)÷T=5.226×ΔA
V反总:反应体系总体积,9.75×10-4L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1 cm;V 样:加入样本体积,0.03mL;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,2min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W: 样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万。
1、 测定过程中试剂四、样本在冰上放置,以免变性和失活。
2、 比色皿中反应液的温度尽量保持 37℃或 25℃,取小烧杯一只装入一定量的 37℃或 25℃蒸馏水,将此烧杯放入 37℃或 25℃水浴锅中。在反应过程中把比色皿连同反应液放在此烧杯中。
3、 最好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以保证实验结果的准确性。
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