丙酮酸激酶(PK)活性检测试剂盒-植物检测试剂盒-丙酮酸激酶试剂盒



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货号:UPLC-MS-4205 规格:100T/96S 微量法
货号:UPLC-MS-4204 规格:50T/48S 紫外分光光度法
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液

液体 60 mL×1

4℃保存

试剂一

液体 45 mL×1

4℃保存

试剂二

粉剂×1

-20℃保存

试剂三

粉剂×1

-20℃保存

试剂四

液体 50μL×1

4℃保存

溶液的配制:

1 试剂三:临用前每支加入 1.5mL 双蒸水充分溶解备用,用不完的试剂仍 4℃保存一周;

2 试剂四:液体置于试剂瓶内 EP 管中。临用前根据用量按照试剂四:蒸馏水为 1:20 的体积比例充分混匀, 冰上放置备用,现用现配;

3 工作液的配置:临用前将试剂二转移至试剂一中,充分溶解待用,现配现用。

产品说明:

PK(EC 2.7.1.40)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,催化糖酵解过程中的最后一步反应,是糖酵解过程中的主要限速酶之一,也是产生ATP的关键酶之一,因此测定PK活性具有重要意义。

PK催化磷酸烯醇式丙酮酸和ADP生成ATP和丙酮酸,乳酸脱氢酶进一步催化NADH和丙酮酸生成乳酸和NAD+ 340nm下测定NADH下降速率,即可反映PK活性。

注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 石英比色皿、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1. 细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积(mL) 500-1000 1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或者 200W,超声 3s 间隔 10s,重复 30 次);8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

2. 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL) 1:5-10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液),进行冰浴匀浆;8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

3. 血清(浆)样本:直接检测。

二、测定步骤

1. 分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 340nm,蒸馏水调零。

2. 将工作液、试剂三置于 37℃(哺乳动物) 25℃(其他物种)预热 10 分钟。

3. 加样表:

试剂名称(μL

测定管

工作液

900

试剂三

30

试剂四

15

样本

30

将上述试剂按顺序加入 1 mL 石英比色皿中,立即混匀,加样本的同时开始计时,在 340 nm 波长下记录 20 秒时的初始吸光度 A1,比色后迅速将比色皿连同反应液一起放入 37℃(哺乳动物) 25℃(其它物种)水浴中准确反应 2 分钟;迅速取出比色皿并擦干,340 nm 下比色,记录 2 20 秒时的吸光度 A2,计算 ΔA=A1-A2。

三、PK 活力单位的计算

1. 按血清(浆)PK体积计算

单位的定义:每毫升血清(浆)在反应体系中每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。PK(U/mL)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109] ÷V样÷T=2613×ΔA

2. 按样本蛋白浓度计算

单位的定义:每mg组织蛋白每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。PK(U/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109] ÷(Cpr×V样)÷T=2613×ΔA÷Cpr

3. 按样本质量计算

单位的定义:每g组织每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。PK(U/g 质量)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109] ÷(W×V样÷V样总)÷T=2613×ΔA÷W4. 按细菌或细胞数量计算

单位的定义:每1万个细菌或细胞在反应体系中每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。PK(U/104 cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109] ÷(500×V样÷V样总)÷T=5.226×ΔA

V反总:反应体系总体积,9.75×10-4L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1 cm;V 样:加入样本体积,0.03mL;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,2min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W 样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万。

注意事项:

1 测定过程中试剂四、样本在冰上放置,以免变性和失活。

2 比色皿中反应液的温度尽量保持 37℃ 25℃,取小烧杯一只装入一定量的 37℃ 25℃蒸馏水,将此烧杯放 37℃ 25℃水浴锅中。在反应过程中把比色皿连同反应液放在此烧杯中。

3 最好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以保证实验结果的准确性。


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