上海液质是一家拥有12000多种高端成熟型生化、elisa、土壤、植物、细胞等试剂盒的生产厂家,并承接生化代测,Elisa代测,HPLC 检测,GC检测,GC-MS 检测,LC-MS检测,ICP-MS检测 、土壤、植物、动物,成分酶活检测等科研检测服务。如有需要立即询购
货号:UPLC-MS-4144 | 规格:50T/24S | 可见分光光度法 |
试剂名称 |
规格 |
保存条件 |
提取液 |
液体 30 mL×1 瓶 |
4℃保存 |
试剂一 |
液体 8 mL×1 瓶 |
4℃保存 |
试剂二 |
粉剂×1 瓶 |
4℃保存 |
试剂三 |
液体 20 mL×1 瓶 |
4℃保存 |
标准品 |
粉剂×1 支 |
4℃保存 |
溶液的配制:
1、 试剂一:若溶液中有晶体析出,37℃水浴溶解;
2、 试剂二:临用前加入 8 mL 蒸馏水,60℃水浴助溶;
3、 标准品:10mg 半乳糖醛酸。临用前加入 0.943 mL 蒸馏水,配成 50 μmol/mL 的标准液。
PG 水解多聚半乳糖醛酸生成半乳糖醛酸,半乳糖醛酸与 DNS 试剂反应生成在 540 nm 有特征吸收峰的棕红色物质,测定 540 nm 处吸光值变化可计算得果胶酶活性。
增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、低温台式离心机、水浴锅、1 mL 玻璃比色皿、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
组织:按照质量(g):提取液体积(mL)为 1 : 5~10 的比例(建议称取约 0.1 g,加入 1 mL 提取液)加入提取液,冰浴匀浆后于 4℃,16000 g,离心 10 min,取上清置于冰上待测。
细菌:先收集细菌到离心管内,离心后弃上清;按照细菌数量(104 个):提取液体积(mL)为 500~1000︰1 的比例(建议 500 万个细菌加入 1 mL 提取液),冰浴超声波破碎细菌(功率 20%或 200 W,超声 3 s,间隔 7 s, 总时间 5 min);然后 4℃,16000 g,离心 10 min 取上清置于冰上待测。
液体:直接检测或用提取液稀释后检测。
1、 分光光度计预热 30 min 以上,调节波长至 540 nm,蒸馏水调零。
2、 将 50 μmol/mL 标准液用蒸馏水稀释为 10、6、4、3、2、1.5、1.2 μmol/mL 的标准溶液备用。
3、 操作表:(在 1.5mL 离心管中)
试剂名称(μL) |
测定管 |
对照管 |
空白管 |
标准管 |
样本 |
50 |
50 |
- |
- |
蒸馏水 |
- |
- |
50 |
- |
标准溶液 |
- |
- |
|
50 |
试剂一 |
100 |
100 |
100 |
100 |
试剂二 |
100 |
- |
100 |
100 |
40℃ 水浴准确反应 2 h 后,沸水浴加热 10 min(盖紧,防止水分散失), 取出后冷却至室温。 |
- |
|||
试剂二 |
- |
100 |
- |
- |
试剂三 |
250 |
250 |
250 |
250 |
沸水浴加热 5 min(盖紧,防止水分散失),取出后冷却至室温。 |
||||
蒸馏水 |
500 |
500 |
500 |
500 |
测定 540 nm 处的吸光度,记为 A 测定管、A 对照管、A 空白管、A 标准管,计算 ΔA=A 测定管-A 对照管,ΔA 标准=A 标准管-A 空白管。每个测定管需设一个对照管。 |
1、 标准曲线的绘制:
以各个标准溶液的浓度为 x 轴,其对应的 ΔA 标准为 y 轴,绘制标准曲线,得到标准方程 y= kx+b,将 ΔA 带入方程得到 x(µmol/mL)
2、 PG 酶活的计算:
(1) 按样本蛋白浓度计算
酶活定义:在 40℃,pH 6.0 的条件下,每毫克蛋白每小时分解多聚半乳糖醛酸产生 1 μmol 的半乳糖醛酸定义为一个酶活力单位。
PG 酶活(U/mg prot)= x×V 提取÷(V 提取×Cpr)÷T = 0.5x÷Cpr
(2) 按样本质量计算
酶活定义:在 40℃,pH 6.0 的条件下,每克样本每小时分解多聚半乳糖醛酸产生 1 μmol 的半乳糖醛酸定义为一个酶活力单位。
PG 酶活(U/g 质量)= x×V 提取÷W÷T = 0.5x÷W
(3) 按照细菌数量计算
酶活定义:在 40℃,pH 6.0 的条件下,每 104 个细菌每小时分解多聚半乳糖醛酸产生 1 μmol 的半乳糖醛酸定义为一个酶活力单位。
PG 酶活(U/104 cell)= x×V 提取÷T÷细菌数量(万个)= 0.5x÷细菌数量(万个)
(4) 按液体体积计算
酶活定义:在 40℃,pH 6.0 的条件下,每 mL 样本每小时分解多聚半乳糖醛酸产生 1 μmol 的半乳糖醛酸定义为一个酶活力单位。
PG 酶活(U/mL)= x×V 样÷V 样÷T=0.5x
V 提取:加入提取液体积,1 mL;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;W:样本质量,g;V 样:反应体系中样本体积,0.05 mL;T:酶促反应时间,2 h。
1、 样本提取上清液置于冰上待测,且样本提取完成后建议当天提取当天内测完。
2、 当 A 大于 1.2 时,建议将样本用提取液稀释后再进行测定,并在计算公式中乘以相应稀释倍数。
3、 植物果实组织建议将样本稀释 10 倍或 20 倍后再测定。
4、 若样本 ΔA 值偏小,建议延长酶促反应时间,并在计算公式中除以相应时间。
独立公正 方法科学 规范严谨 服务周到