多聚半乳糖醛酸酶(PG)活性检测试剂盒-植物试剂盒-多聚半乳糖醛酸酶试剂盒



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货号:UPLC-MS-4144 规格:50T/24S 可见分光光度法

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液

液体 30 mL×1

4℃保存

试剂一

液体 8 mL×1

4℃保存

试剂二

粉剂×1

4℃保存

试剂三

液体 20 mL×1

4℃保存

标准品

粉剂×1

4℃保存

溶液的配制:

1 试剂一:若溶液中有晶体析出,37℃水浴溶解;

2 试剂二:临用前加入 8 mL 蒸馏水,60℃水浴助溶;

3 标准品:10mg 半乳糖醛酸。临用前加入 0.943 mL 蒸馏水,配成 50 μmol/mL 的标准液。

产品说明:

PG 水解多聚半乳糖醛酸生成半乳糖醛酸,半乳糖醛酸与 DNS 试剂反应生成在 540 nm 有特征吸收峰的棕红色物质,测定 540 nm 处吸光值变化可计算得果胶酶活性。

注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者

增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计、低温台式离心机、水浴锅、1 mL 玻璃比色皿、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

组织:按照质量(g):提取液体积(mL) 1 : 5~10 的比例(建议称取约 0.1 g,加入 1 mL 提取液)加入提取液,冰浴匀浆后于 4℃,16000 g,离心 10 min,取上清置于冰上待测。

细菌:先收集细菌到离心管内,离心后弃上清;按照细菌数量(104 个):提取液体积(mL) 500~1000︰1 的比例(建议 500 万个细菌加入 1 mL 提取液),冰浴超声波破碎细菌(功率 20% 200 W,超声 3 s,间隔 7 s 总时间 5 min);然后 4℃,16000 g,离心 10 min 取上清置于冰上待测。

液体:直接检测或用提取液稀释后检测。

二、测定步骤

1 分光光度计预热 30 min 以上,调节波长至 540 nm,蒸馏水调零。

2 50 μmol/mL 标准液用蒸馏水稀释为 10、6、4、3、2、1.5、1.2 μmol/mL 的标准溶液备用。

3 操作表:( 1.5mL 离心管中)

试剂名称(μL)

测定管

对照管

空白管

标准管

样本

50

50

-

-

蒸馏水

-

-

50

-

标准溶液

-

-

 

50

试剂一

100

100

100

100

试剂二

100

-

100

100

40℃ 水浴准确反应 2 h 后,沸水浴加热 10 min(盖紧,防止水分散失), 取出后冷却至室温。

 

-

试剂二

-

100

-

-

试剂三

250

250

250

250

沸水浴加热 5 min(盖紧,防止水分散失),取出后冷却至室温。

蒸馏水

500

500

500

500

测定 540 nm 处的吸光度,记为 A 测定管、A 对照管、A 空白管、A 标准管,计算 ΔA=A 测定管-A

对照管,ΔA 标准=A 标准管-A 空白管。每个测定管需设一个对照管。

三、PG酶活计算

1 标准曲线的绘制:

以各个标准溶液的浓度为 x 轴,其对应的 ΔA 标准为 y 轴,绘制标准曲线,得到标准方程 y= kx+b,将 ΔA 带入方程得到 x(µmol/mL)

2 PG 酶活的计算:

(1) 按样本蛋白浓度计算

酶活定义:在 40℃,pH 6.0 的条件下,每毫克蛋白每小时分解多聚半乳糖醛酸产生 1 μmol 的半乳糖醛酸定义为一个酶活力单位。

PG 酶活(U/mg prot)= x×V 提取÷(V 提取×Cpr)÷T = 0.5x÷Cpr

(2) 按样本质量计算

酶活定义:在 40℃,pH 6.0 的条件下,每克样本每小时分解多聚半乳糖醛酸产生 1 μmol 的半乳糖醛酸定义为一个酶活力单位。

PG 酶活(U/g 质量)= x×V 提取÷W÷T = 0.5x÷W

(3) 按照细菌数量计算

酶活定义:在 40℃,pH 6.0 的条件下,每 104 个细菌每小时分解多聚半乳糖醛酸产生 1 μmol 的半乳糖醛酸定义为一个酶活力单位。

PG 酶活(U/104 cell)= x×V 提取÷T÷细菌数量(万个)= 0.5x÷细菌数量(万个)

(4) 按液体体积计算

酶活定义:在 40℃,pH 6.0 的条件下,每 mL 样本每小时分解多聚半乳糖醛酸产生 1 μmol 的半乳糖醛酸定义为一个酶活力单位。

 PG 酶活(U/mL)= x×V 样÷V 样÷T=0.5x

V 提取:加入提取液体积,1 mL;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;W:样本质量,g;V 样:反应体系中样本体积,0.05 mL;T:酶促反应时间,2 h。

注意事项:

1 样本提取上清液置于冰上待测,且样本提取完成后建议当天提取当天内测完。

2 A 大于 1.2 时,建议将样本用提取液稀释后再进行测定,并在计算公式中乘以相应稀释倍数。

3 植物果实组织建议将样本稀释 10 倍或 20 倍后再测定。

4 若样本 ΔA 值偏小,建议延长酶促反应时间,并在计算公式中除以相应时间。


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