植物总酚(TP)含量检测试剂盒



产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液

液体 125 mL×1 瓶(自备)

常温保存

试剂一

液体 5 mL×1

2-8℃保存

试剂二

液体 8 mL×1

2-8℃保存

标准品

粉剂×1

2-8℃保存

溶液的配制:

1 提取液:自备 60%乙醇,常温保存。

2 标准品:5mg 没食子酸。临用前加入 1mL 蒸馏水,50℃加热溶解,配制成 5mg/mL 的标准溶液,2-8℃保存两周。

产品说明:

植物酚类物质具有清除自由基,抗氧化抗衰老的作用,具有较高的营养价值和医疗保健作用而广泛应用于化妆品、食品、医药等领域。

在碱性条件下,酚类物质将钨钼酸还原,产生蓝色化合物,在760nm处有特征吸收峰,测760nm处的吸光值,即可得样本总酚含量。

技术指标:

最低检出限:0.0015 mg/mL

线性范围:0.0024-0.3125 mg/mL

注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计/酶标仪、微量玻璃比色皿/96孔板、天平、烘箱、粉碎仪/研钵、30-50目筛、超声清洗仪、60%       乙醇、台式离心机、蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

将样本烘干至恒重,粉碎,过 30-50 目筛之后,称取约 0.1g,加入 2.5mL 提取液,用超声提取法进行提取, 超声功率 300W,温度 60℃,提取 30min。12000rpm,25℃,离心 10min,取上清,用提取液定容至 2.5mL,待测。

二、测定步骤

1. 分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至760nm,分光光度计蒸馏水调零。

2. 标准液的稀释:将5mg/mL没食子酸标准溶液用蒸馏水稀释至0.1562、0.0781、0.0391、0.0195、0.0098、0.0049 mg/mL,待测。

3. 标准液稀释可参考下表:

序号

稀释前浓度mg/mL

标准液体积(µL

蒸馏水体积(µL

稀释后浓度mg/mL

1

5

125

875

0.625

2

0.625

250

750

0.15625

3

0.15625

200

200

0.078125

4

0.078125

200

200

0.0391

5

0.0391

200

200

0.0191

6

0.0191

200

200

0.0098

7

0.0098

200

200

0.0049

备注:实验中每个标准管需 10µL 标准溶液。

4. 操作表

试剂名称

对照管

测定管

标准管

空白管

样本待测液(µL

10

10

-

-

标准液(µL

-

-

10

-

蒸馏水(µL

-

-

-

10

试剂一(µL

-

50

50

50

涡旋混匀,室温准确静置2min

试剂二(µL

50

50

50

50

蒸馏水(µL

140

90

90

90

涡旋混匀,室温准确静置 10 min,于微量玻璃比色皿/96 孔板中测定 760nm 处的吸光值,分别记为 A 对照管、A 测定管、A 标准管、A 空白管。计算ΔA 测定=A 测定管-A 对照管,ΔA 标准

=A 标准管-A 空白管。每个测定管需设一个对照管。标准曲线和空白管只需测 1-2 次。

三、总酚含量计算

1. 标准曲线绘制:根据标准管的浓度(y,mg/mL)和吸光度ΔA标准(x,ΔA标准),建立标准曲线。根据标准曲线,将ΔA测定(x,ΔA测定)带入公式计算样本浓度(y,mg/mL)。

2. 植物总酚含量计算:

(1) 按样本质量计算:总酚含量(mg/g 质量)=y×V提取÷W=2.5y÷W

(2) 按样本蛋白浓度计算:总酚含量(mg/mg prot)=y×V提取÷(V提取×Cpr)=y ÷Cpr V提取:加入提取液体积,2.5mL;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g。

注意事项:

1. 如果测定吸光值超过线性范围吸光值,可以增加样本量或者稀释样本后再进行测定。注意同步修改计算公式。

2. 试剂一对皮肤有一定的刺激性,请操作时做好防护措施。


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